SECAGEM DE SPIRULINA SP. EM LEITO DE JORRO: EFEITO DA TEMPERATURA NAS CARACTERÍSTICAS DO PRODUTO DESIDRATADO

SECAGEM DE SPIRULINA SP. EM LEITO DE JORRO: EFEITO DA TEMPERATURA NAS CARACTERÍSTICAS DO PRODUTO DESIDRATADO

LARROSA, A. P. Q.; SILVA, K. T. DA; LAMAS, G. T.; SOARES, V. P.; PINTO, L. A. A.

Artigo:

Neste trabalho foi avaliado a influência da temperatura do ar de secagem da Spirulina sp. em leito de jorro nas características do produto desidratado. A Spirulina sp LEB-18 foi cedida pelo laboratório de Engenharia Bioquímica (FURG), sendo cultivada em fotobiorreatores abertos em condições não controladas utilizando meio de cultivo Zarrouk. A secagem da biomassa foi realizada em leito de jorro de geometria cônica com 500 g de partículas de polietileno. Os experimentos foram avaliados em diferentes temperaturas do ar de entrada (80, 90, 100 e 110°C), sendo fixadas a vazão de alimentação e a concentração de sólidos da biomassa de 200 mL/he 5% (m/m), respectivamente. O produto foi avaliado quanto ao conteúdo de ficocianina, oxidação lipídica, compostos fenólicos e solubilidade proteica. A maior preservação da ficocianina e menor oxidação lipídica do produto foram observadas à temperatura de secagem de 80°C. No entanto, os compostos fenólicos e a solubilidade proteica à temperatura de 100°C mostraram os melhores resultados.

Neste trabalho foi avaliado a influência da temperatura do ar de secagem da Spirulina sp. em leito de jorro nas características do produto desidratado. A Spirulina sp LEB-18 foi cedida pelo laboratório de Engenharia Bioquímica (FURG), sendo cultivada em fotobiorreatores abertos em condições não controladas utilizando meio de cultivo Zarrouk. A secagem da biomassa foi realizada em leito de jorro de geometria cônica com 500 g de partículas de polietileno. Os experimentos foram avaliados em diferentes temperaturas do ar de entrada (80, 90, 100 e 110°C), sendo fixadas a vazão de alimentação e a concentração de sólidos da biomassa de 200 mL/he 5% (m/m), respectivamente. O produto foi avaliado quanto ao conteúdo de ficocianina, oxidação lipídica, compostos fenólicos e solubilidade proteica. A maior preservação da ficocianina e menor oxidação lipídica do produto foram observadas à temperatura de secagem de 80°C. No entanto, os compostos fenólicos e a solubilidade proteica à temperatura de 100°C mostraram os melhores resultados.

Palavras-chave:

DOI: 10.5151/chemeng-cobeq2014-0776-24032-155357

Referências bibliográficas

• [1] ADIBA, B. D.; SALEM, B.; NABIL, S.; ABDELHAKIM, M. Preliminary characterization of food tablets from date (Phoenix dactylifera L.) and spirulina (Spirulina sp.) powders. Powder Technol., v. 208, p. 725-730, 2011.
• [2] ANTELO, F. S.; COSTA, J. V.; KALIL, S. J. Thermal degradation kinetics of the phycocyanin from Spirulina platensis. Biochem. Eng. J., v. 41, p. 43-47, 2008.
• [3] AOAC. Official Methods of Analysis, 16th edn. Arlington, Virginia, USA: Association of Official Analytical Chemists, 1995.
• [4] BENNETT, A.; BOGORAD, L. Complimentary chromatic adaptation in a filamentous blue-green alga. J. Cell Biol., v. 58, p. 419-435, 1973.
• [5] DESMORIEUX, H.; HERNANDEZ, F. Biochemical and physical criteria of Spirulina after different drying processes. In: Proceedings of the 14th International Drying Symposium (IDS), B, p. 900–907, 2004.
• [6] DISSA, A. O.; DESMORIEUX, H.; SAVADOGO, P. W.; SEGDA, B. G.; KOULIDIATI, J. Shrinkage, porosity and density behaviour during convective drying of Spirulina. J. Food Eng., v. 97, p. 410-418, 2010.
• [7] EPSTEIN, N.; GRACE, J. R. Spouted and Spout-fluid beds: Fundamentals and applications. New York: Cambridge University Press, 337p, 2011.
• [8] ESTRADA, J. E.; BESCÓS, P.; VILLAR DEL FRESNO, A. M. Antioxidant activity of diVerent fractions of Spirulina platensis protean extract. II Farmaco, v. 56, 497–500, 2001.
• [9] FOLCH, J.; LEES, M. A simple method for isolation and purification of total lipids from animal tissues. J. Biol. Chem., v. 226, p. 497–509, 1957.
• [10] MIRANDA, M. S.; CINTRA, R. G.; BARROS, S. B. M.; FILHO, J. M. Antioxidant activity of the microalga Spirulina maxima. Braz. J. Med. Biol. Res., v. 31, p. 1075–1079, 1998.
• [11] MORAES, C. C.; BURKERT, J. F. M.; KALIL, S. J. C-phycocyanin extraction process for large-scale use. J. Food Biochem., v. 34, p. 133–148, 2010.
• [12] MORAIS, M. G.; REICHERT, C. C.; DALCANTON, F.; DURANTE, A. J.; MARINS, L. F.; COSTA, J. A.V. Isolation and characterization of a new Arthrospira strain. Z. Naturforsch. V. 63c, p. 144, 2008.
• [13] MORR, C. V.; GERMAN, B.; KINSELA, J. E.; REGENSTEIN, J. M.; VAN-BUREN, J. P.; KILARA, A.; LEWIS, B. A.; MAGNINO, M. E. Collaborative study to develop a standardized food protein solubility procedure. J. Food Sci., v. 50, p. 1715-1718, 1985.
• [14] Área temática: Engenharia e Tecnologia de Alimentos 6OLIVEIRA, E. G.; ROSA, G. S.; MORAES, M. A.; PINTO, L. A. A. Phycocyanin contento f Spirulina platensis dried in spouted bed and thin layer. J. Food Process Eng., v. 31, p. 34-50, 2008.
• [15] OLIVEIRA, E. G.; DUARTE, J. H.; MORAES, K.; CREXI, V. T.; PINTO, L. A. A. Optimisation of Spirulina platensis convective drying: evaluation of phycocyanin loss and lipid oxidation. Int. J. Food Sci.Technol., v. 45, p. 1572- 1578, 2010.
• [16] OLIVEIRA, M. S.; DORS, G. C.; SOUZA-SOARES, L. A.; BADIALE-FURLONG, E. Antifungal and antioxidant activity of vegetables extracts. Food Nutrition, v. 18, p.267-275, 2007.
• [17] REDDY, M. C.; SUBHASHINI, J.; MAHIPAL, S. V. K.; BHAT, V. B.; REDDY, P. S.; KIRANMAI, G.; MADYASTHA, K. M.; REDDANNA, P. C-Phycocyanin, a selective cyclooxygenase-2 inhibitor, induces apoptosis in lipopolysaccharide- stimulated RAW 264.7 macrophages. Biochem. Biophys. Res. Commun., v. 304, p. 385–392, 2003.
• [18] RYCKEBOSCH, E.; MUYLAERT, K.; EECKHOUT, M.; RUYSSEN, T.; FOUBERT, I. Influence of drying and storage on lipid and carotenoid stability of the microalga Phaeodactylum tricornutum. J. Agric. Food Chem., v. 59, p. 11063-11069, 2011.
• [19] THAJUDDIN, N.; SUBRAMANIAN, G. Cyanobacterial biodiversity and potential application in biotechnology, Curr. Sci. India, v. 89, p. 47–57, 2005.
• [20] TIBURCIO, P. C.; GALVEZ, F. C. F.; CRUZ, L. J.; GAVINO, V. C. Optimization of low-cost drying methods to minimize lipid peroxidation in Spirulina platensis grown in the Philippines. J. Applied Phycol., v. 19, p. 719-726, 2007.
• [21] WOJDYLO, A.; FIGIEL, A.; OSZMIANSKI. Effect of drying methods with the application of vacuum microwaves on the bioactive compounds, color, and antioxidant activity of Strawberry Fruits. J. Agric. Food Chem., v. 57, p. 1337-1343, 2009.

Como citar:

LARROSA, A. P. Q.; SILVA, K. T. DA; LAMAS, G. T.; SOARES, V. P.; PINTO, L. A. A.; "SECAGEM DE SPIRULINA SP. EM LEITO DE JORRO: EFEITO DA TEMPERATURA NAS CARACTERÍSTICAS DO PRODUTO DESIDRATADO", p-3955-3961. In: Anais do XX Congresso Brasileiro de Engenharia Química - COBEQ 2014 [= Blucher Chemical Engineering Proceedings, v.1, n.2]. São Paulo: Blucher, 2015.
ISSN 23591757, DOI 10.5151/chemeng-cobeq2014-0776-24032-155357