FERMENTAÇÃO SUBMERSA UTILIZANDO Saccharomyces cerevisiae NA PRESENÇA DE AFLATOXINA B1

FERMENTAÇÃO SUBMERSA UTILIZANDO Saccharomyces cerevisiae NA PRESENÇA DE AFLATOXINA B1

de CARVALHO SILVELLO, M. A.; RESCHKE, P. R.; de LIMA, T. S.; KRAUS, R. B.; FELTRIN, A. C. P.; BUFFON, GARDA; J.

Artigo Completo:

Este trabalho teve como objetivo avaliar os parâmetros cinéticos de crescimento, conteúdo proteico extracelular e atividade específica da enzima peroxidase produzidos pela levedura Saccharomyces cerevisiae durante cultivo submerso na presença da Aflatoxina B1. A fermentação alcoólica foi realizada em Erlenmeyer de 250 mL, contendo 170 mL de meio de cultivo YPD, adicionado 6,66% (v/v) do inóculo da levedura Saccharomyces cerevisiae. O cultivo foi conduzido durante 96 h, mantido a 26ºC sem agitação. Os ensaios foram realizados na presença e ausência (controle) de aflatoxina B1 na concentração de 1 µg/mL. A amostragem foi realizada no tempo zero e a cada 24 h para avaliação do pH, concentração celular, concentração proteica e atividade da enzima peroxidase. Em cultivo submerso na presença da micotoxina foi observado um aumento na velocidade específica de crescimento (15%), maior conteúdo de proteínas extracelulares (19% superior) em 72 h de processo fermentativo e maior atividade enzimática específica da peroxidase. Estes resultados confirmam a sensibilidade da levedura frente a toxicidade da aflatoxina B1, contaminante ocorrente em cereais utilizados em processos fermentativos.

Este trabalho teve como objetivo avaliar os parâmetros cinéticos de crescimento, conteúdo proteico extracelular e atividade específica da enzima peroxidase produzidos pela levedura Saccharomyces cerevisiae durante cultivo submerso na presença da Aflatoxina B1. A fermentação alcoólica foi realizada em Erlenmeyer de 250 mL, contendo 170 mL de meio de cultivo YPD, adicionado 6,66% (v/v) do inóculo da levedura Saccharomyces cerevisiae. O cultivo foi conduzido durante 96 h, mantido a 26ºC sem agitação. Os ensaios foram realizados na presença e ausência (controle) de aflatoxina B1 na concentração de 1 µg/mL. A amostragem foi realizada no tempo zero e a cada 24 h para avaliação do pH, concentração celular, concentração proteica e atividade da enzima peroxidase. Em cultivo submerso na presença da micotoxina foi observado um aumento na velocidade específica de crescimento (15%), maior conteúdo de proteínas extracelulares (19% superior) em 72 h de processo fermentativo e maior atividade enzimática específica da peroxidase. Estes resultados confirmam a sensibilidade da levedura frente a toxicidade da aflatoxina B1, contaminante ocorrente em cereais utilizados em processos fermentativos.

Palavras-chave:

DOI: 10.5151/chemeng-cobeqic2015-197-32773-260023

Referências bibliográficas

• [1] ANDERSON, N. L. D MATHESON, A. D.; STEINER, S. Proteomics: applications in basic and applied biology. Protein technologies and commercial enzymes, v.11, p. 408–412, 2000.
• [2] BRASIL. Resolução RDC nº 7 de 22 de fevereiro 2011. Agência Nacional de Vigilância Sanitária (ANVISA). Disponível em Andlt; http://www.micotoxinas.com.br/legisla.html
• [3] Andgt;. Acesso em 25 jan. 2015.
• [4] BRETANHA, C. C.; Caracterização de cultivo submerso com Saccharomyces cerevisiae para produção de biomarcadores micotoxicológicos. Dissertação (Programa de Pós-Graduação em Engenharia e Ciência de Alimentos) – FURG. 2014.
• [5] BOLECHOVÁ, M.; BONEŠOVAÁ, K.; BĚLÁKOVÁ, S.; ČÁSLAVSKÝ, J.; POSPÍCHALOVÁ, M.; MIKULÍKOVÁ, R.; Determination of seventeen mycotoxins in barley and malt in the Czech Republic. Food Control, v. 47, p-108-113, 2015.
• [6] CARÃO, A. C. P.; BURBARELLI, M. F. C.; POLYCARPO, G. V.; SANTOS, A. R. de; ALBUQUERQUE, R. de; OLIVEIRA, C. A. F. de; Métodos físicos e químicos de detoxificação de aflatoxinas e redução da contaminação fúngica na cadeia produtiva avícola. Ciência Rural, v. 44, n. 4, Santa Maria, 2014.
• [7] FLORES, J. C. J.; Produção de biomarcadores para deoxinivalenol por Saccharomyces cerevisiae em cultivo submerso. Dissertação (Programa de Pós-Graduação em Engenharia e Ciência de Alimentos) – FURG. 2013.
• [8] GARDA, J.; MACEDO, R. M.; FARIA, R.; BERND, L.; DORS, G. C.; BADIALE-FURLONG, E.; Alcoholic fermentation effects on malt spiked with trichothecenes. Food Control, v. 16, p-423-428, 2005.
• [9] KHAN, A. A.; ROBINSON, D. S. Hydrogen donor specificity of mango isoperoxidases. Food Chemistry, v. 49, n. 4, p. 407-410, 1994.
• [10] KLOSOWSKI, G.; MIKULSKI, D.; The effect of raw material contamination with mycotoxins on the composition of alcoholic fermentation volatile by-products in raw spirits. Bioresource Technology, v. 101, p. 9723-9727, 2010.
• [11] LOWRY, O. H.; ROSENBROUGH, M. J.; FARR, A. L.; RANDALL, R. J. Protein measurement with the Folin Phenol Reagent. Journal of Biological Chemistry, v. 193, p. 265-275, 1951.
• [12] MALLMANN, C. A.; SANTURIO, J. M.; WENTZ, I.; Aflatoxinas – Aspectos clínicos e toxicológicos em suínos. Ciência Rural, Santa Maria, v. 24, n.3, p. 635-643, 1994.
• [13] OLIVEIRA, C. A.F.; ALBUQUERQUE, R.; CORREA, B.; KOBASHIGAWA, E.; REIAS, T. A.; FAGUNDES, A. C. A.; LIMA, F. R.; Produção e qualidade dos ovos de poedeiras submetidas à intoxicação prolongada com Aflatoxina B1. Arq. Inst. Biol., São Paulo, v.68, n.2, p.1-4, jul./dez., 2001.
• [14] RODRÍGUEZ-CARRASCO, Y.;FATTORE, M.; ALBRIZIO, S.; BERRADA, H.; MAÑES, J.; Occurrence of Fusarium mycotoxins and their dietary intake through beer consumption by the European population. Food Chemistry, v. 178, p. 149-155, 2015.

Como citar:

de CARVALHO SILVELLO, M. A.; RESCHKE, P. R.; de LIMA, T. S.; KRAUS, R. B.; FELTRIN, A. C. P.; BUFFON, GARDA; J., ; "FERMENTAÇÃO SUBMERSA UTILIZANDO Saccharomyces cerevisiae NA PRESENÇA DE AFLATOXINA B1", p-1878-1883. In: Anais do XI Congresso Brasileiro de Engenharia Química em Iniciação Científica [=Blucher Chemical Engineering Proceedings, v. 1, n.3]. ISSN Impresso: 2446-8711. São Paulo: Blucher, 2015.
ISSN 23591757, DOI 10.5151/chemeng-cobeqic2015-197-32773-260023